Desenvolvimento e sanidade de abelhas africanizadas em ambientes contrastantes da Mata Atlântica m ambientes contrastantes da Mata Atlântica

DOI: 10.52945/rac.v39i.2361
Publicado 25-06-2026

Autores

Resumo

As abelhas dependem de recursos florais para sua nutrição, o que influencia diretamente a sua imunidade. Além disso, fatores abióticos modulam o desempenho das colônias e a sanidade apícola. Ademais, as alterações antropogênicas podem modificar a composição, a qualidade e a disponibilidade desses recursos. Neste contexto, o objetivo deste estudo foi avaliar o desenvolvimento colonial e a sanidade de Apis mellifera em dois ambientes da Mata Atlântica. As avaliações ocorreram quadrimestralmente, entre dezembro de 2022 e novembro de 2024, em cinco colônias nos municípios de Florianópolis e Santa Rosa de Lima, Santa Catarina, Brasil. Foram avaliadas a população de abelhas adultas, área dos favos ocupada com cria aberta e fechada e com alimento armazenado (mel e pólen). A sanidade foi determinada com base na infestação de Varroa destructor e na incidência e prevalência de Nosema spp. No inverno, em Florianópolis, as temperaturas médias mais elevadas reduziram o esforço de termorregulação, favorecendo a expansão tanto da cria aberta quanto da cria fechada. Em Florianópolis, observaram-se maiores níveis de infestação por V. destructor, provavelmente devido ao microclima local e à disponibilidade de recursos florais. A prevalência de Nosema spp. em abelhas operárias variou de 45% a 63% em Florianópolis e de 30% a 85% em Santa Rosa de Lima, provavelmente influenciadas pela umidade relativa do ar e o estresse nutricional. Dessa forma, é essencial manter vigilância sanitária, adotando práticas de manejo ajustadas ao microclima e ao contexto local para sustentar a resiliência das colônias de A. mellifera, especialmente em ambientes antropizados. 

Referências

ARENA, M. V. N.; TOPPA, R. H.; MARTINES, M.; ALVES-DOS-SANTOS, I. Release experiments as an indicator of flying activities of stingless bees in urban areas. Frontiers in Sustainable Cities, Lausanne, v. 4, p. 1103835, 2022. DOI: https://doi.org/10.3389/frsc.2022.1103835.

BRANCHICCELA, B.; CASTELLI, L.; CORONA, M.; DÍAZ-CETTI, S.; INVERNIZZI, C.; MARTÍNEZ DE LA ESCALERA, G.; MENDOZA, Y.; SANTOS, E.; SILVA, C.; ZUNINO, P.; ANTÚNEZ, K. Impact of nutritional stress on the honeybee colony health. Scientific Reports, London, v. 9, n. 1, p. 10156, 2019. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-019-46453-9.

CALDERÓN, R. A.; ZAMORA, L. G.; VAN VEEN, J. W.; QUESADA, M. V. A comparison of the reproductive ability of Varroa destructor (Mesostigmata: Varroidae) in worker and drone brood of Africanized honey bees (Apis mellifera). Experimental and Applied Acarology, Dordrecht, v. 43, n. 1, p. 25–32, 2007. DOI: https://doi.org/10.1007/s10493-007-9102-1.

CALIS, J. N. M.; FRIES, I.; RYRIE, S. C. Population modelling of Varroa jacobsoni Oud. Apidologie, Versailles, v. 30, n. 2–3, p. 111–124, 1999. DOI: https://doi.org/10.1051/apido:19990203.

CASTELLI, L.; BRANCHICCELA, B.; GARRIDO, M.; INVERNIZZI, C.; PORRINI, M.; ROMERO, H.; SANTOS, E.; ZUNINO, P.; ANTÚNEZ, K. Impact of nutritional stress on honeybee gut microbiota, immunity, and Nosema ceranae infection. Microbial Ecology, New York, v. 80, n. 4, p. 908–919, 2020. DOI: https://doi.org/10.1007/s00248-020-01538-1.

DE JONG, D.; DE ANDREA ROMA, D.; GONÇALVES, L. S. A comparative analysis of shaking solutions for the detection of Varroa jacobsoni on adult honeybees. Apidologie, Versailles, v. 13, n. 3, p. 297–306, 1982. DOI: https://doi.org/10.1051/apido:19820308.

DELAPLANE, K. S.; VAN DER STEEN, J.; GUZMÁN, E. Standard methods for estimating strength parameters of Apis mellifera colonies. Journal of Apicultural Research, London, v. 52, n. 1, p. 1–12, 2013. DOI: https://doi.org/10.3896/IBRA.1.52.1.03.

DEGRANDI-HOFFMAN, G.; CHEN, Y. Nutrition, immunity and viral infections in honey bees. Current Opinion in Insect Science, London, v. 10, p. 170–176, 2015. DOI: https://doi.org/10.1016/j.cois.2015.05.007.

DIETEMANN, V.; NAZZI, F.; MARTIN, S. J.; ANDERSON, D. L.; LOCKE, B.; DELAPLANE, K. S.; WAUQUIEZ, Q.; TANNAHILL, C.; FREY, E.; ZIEGELMANN, B.; ROSENKRANZ, P.; ELLIS, J. D. Standard methods for Varroa research. Journal of Apicultural Research, London, v. 52, n. 1, p. 1–54, 2013. DOI: https://doi.org/10.3896/IBRA.1.52.1.09.

FAITA, M. R.; CARDOZO, M. M.; AMANDIO, D. T. T.; ORTH, A. I.; NODARI, R. O. Glyphosate-based herbicides and Nosema sp. microsporidia reduce honey bee (Apis mellifera L.) survivability under laboratory conditions. Journal of Apicultural Research, London, v. 59, n. 4, p. 332–342, 2020. DOI: https://doi.org/10.1080/00218839.2020.1736782.

FAITA, M. R.; CHAVES, A.; NODARI, R. O. A expansão do agronegócio: impactos nefastos do desmatamento, agrotóxicos e transgênicos nas abelhas. Desenvolvimento e Meio Ambiente, Curitiba, v. 57, p. 376–394, 2021. DOI: https://doi.org/10.5380/dma.v57i0.76157.

FRIES, I.; CHAUZAT, M.-P.; CHEN, Y.-P.; DOUBLET, V.; GENERSCH, E.; GISDER, S.; HIGES, M.; MCMAHON, D. P.; MARTÍN-HERNÁNDEZ, R.; NATSOPOULOU, M.; PAXTON, R. J.; TANNER, G.; WEBSTER, T. C.; WILLIAMS, G. R. Standard methods for Nosema research. Journal of Apicultural Research, London, v. 52, n. 1, p. 1–28, 2013. DOI: https://doi.org/10.3896/IBRA.1.52.1.14.

FUCHS, S. Preference for drone brood cells by Varroa jacobsoni Oud in colonies of Apis mellifera carnica. Apidologie, Versailles, v. 21, n. 3, p. 193–199, 1990. DOI: https://doi.org/10.1051/apido:19900304.

JABAL-URIEL, C.; BARRIOS, L.; BONJOUR-DALMON, A.; CASPI-YONA, S.; CHEJANOVSKY, N.; EREZ, T.; HENRIQUES, D.; HIGES, M.; LE CONTE, Y.; LOPES, A. R.; MEANA, A.; PINTO, M. A.; REYES-CARREÑO, M.; SOROKER, V.; MARTÍN-HERNÁNDEZ, R. Epidemiology of the microsporidium Nosema ceranae in four Mediterranean countries. Insects, Basel, v. 13, n. 9, p. 844, 2022. DOI: https://doi.org/10.3390/insects13090844.

JARIMI, H.; TAPIA-BRITO, E.; RIFFAT, S. A. A review on thermoregulation techniques in honey bees’ (Apis mellifera) beehive microclimate and its similarities to the heating and cooling management in buildings. Future Cities and Environment, London, v. 6, n. 1, p. 7, 2020. DOI: https://doi.org/10.5334/fce.81.

LAGE, V. M. G. B.; SANTANA, C. D.; NORONHA, R. P.; BARBOSA, C. D. J.; LIMA, S. T. D. C. Occurrence and distribution of the microsporidium Vairimorpha (Nosema) spp. in apiaries in Brazil – systematic review. Research, Society and Development, Vargem Grande Paulista, v. 13, n. 11, e123131147482, 2024. DOI: https://doi.org/10.33448/rsd-v13i11.47482.

LANNUTTI, L.; GISDER, S.; FLORIN-CHRISTENSEN, M.; GENERSCH, E.; SCHNITTGER, L. Development of a ptp2-LAMP assay for the specific and sensitive detection of Nosema apis and its comparison with ptp3-LAMP for the detection of Nosema ceranae, in a region endemic for both microsporidium pathogens of the western honey bee. International Journal for Parasitology, Oxford, v. 55, n. 8–9, p. 405–416, 2025. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ijpara.2025.04.001.

MACEDO, R. D. C.; SCHMITT FILHO, A. L. S.; FARLEY, J. C.; FANTINI, A. C.; CAZELLA, A. A.; SINISGALLI, P. A. D. A. Land use and land cover mapping in detailed scale: a case study in Santa Rosa de Lima-SC. Boletim de Ciências Geodésicas, Curitiba, v. 24, n. 2, p. 217–234, 2018. DOI: https://doi.org/10.1590/s1982-21702018000200015.

MARTIN, S. J. Ontogenesis of the mite Varroa jacobsoni Oud. in drone brood of the honeybee Apis mellifera L. under natural conditions. Experimental and Applied Acarology, Dordrecht, v. 19, n. 4, p. 199–210, 1995. DOI: https://doi.org/10.1007/BF00130823.

MARTÍN-HERNÁNDEZ, R.; BARTOLOMÉ, C.; CHEJANOVSKY, N.; LE CONTE, Y.; DALMON, A.; DUSSAUBAT, C.; GARCÍA-PALENCIA, P.; MEANA, A.; PINTO, M. A.; SOROKER, V.; HIGES, M. Nosema ceranae in Apis mellifera: a 12 years postdetection perspective. Environmental Microbiology, Oxford, v. 20, n. 4, p. 1302–1329, 2018. DOI: https://doi.org/10.1111/1462-2920.14103.

MINAUD, É.; REBAUDO, F.; MAINARDI, G.; VARDAKAS, P.; HATJINA, F.; STEFFAN-DEWENTER, I.; REQUIER, F. Temperature in overwintering honey bee colonies reveals brood status and predicts colony mortality. Ecological Indicators, Amsterdam, v. 169, p. 112961, 2024. DOI: https://doi.org/10.1016/j.ecolind.2024.112961.

PUNKO, R. N.; CURRIE, R. W.; NASR, M. E.; HOOVER, S. E. Epidemiology of Nosema spp. and the effect of indoor and outdoor wintering on honey bee colony population and survival in the Canadian Prairies. PLOS ONE, San Francisco, v. 16, n. 10, e0258801, 2021. DOI: https://doi.org/10.1371/journal.pone.0258801.

RAJAGOPALAN, K.; DEGRANDI-HOFFMAN, G.; PRUETT, M.; JONES, V. P.; CORBY-HARRIS, V.; PIREAUD, J.; CURRY, R.; HOPKINS, B.; NORTHFIELD, T. D. Warmer autumns and winters could reduce honey bee overwintering survival with potential risks for pollination services. Scientific Reports, London, v. 14, n. 1, p. 5410, 2024. DOI: https://doi.org/10.1038/s41598-024-55327-8.

RSTUDIO TEAM. RStudio: integrated development environment for R. Boston, MA: RStudio, PBC, 2024. Disponível em: https://posit.co/download/rstudio-desktop/. Acesso em: 01 out. 2025.

RETSCHNIG, G.; WILLIAMS, G.; SCHNEEBERGER, A.; NEUMANN, P. Cold ambient temperature promotes Nosema spp. intensity in honey bees (Apis mellifera). Insects, Basel, v. 8, n. 1, p. 20, 2017. DOI: https://doi.org/10.3390/insects8010020.

REZENDE, C. L.; SCARANO, F. R.; ASSAD, E. D.; JOLY, C. A.; METZGER, J. P.; STRASSBURG, B. B. N.; TABARELLI, M.; FONSECA, G. A.; MITTERMEIER, R. A. From hotspot to hopespot: an opportunity for the Brazilian Atlantic Forest. Perspectives in Ecology and Conservation, Amsterdam, v. 16, n. 4, p. 208–214, 2018. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pecon.2018.10.002.

SILVA, S. M. D.; FAITA, M. R.; CHAVES, A.; PAES, J. P. P.; POLTRONIERI, A. S. Effects of Captain®SC and Zignal® fungicides on hygienic behavior and index of Varroa destructor in Apis mellifera (Hymenoptera: Apidae). Ecotoxicology, Dordrecht, v. 34, n. 9, p. 1904–1914, 2025. DOI: https://doi.org/10.1007/s10646-025-02954-0.

STABENTHEINER, A.; KOVAC, H.; MANDL, M.; KÄFER, H. Coping with the cold and fighting the heat: thermal homeostasis of a superorganism, the honeybee colony. Journal of Comparative Physiology A, Heidelberg, v. 207, n. 3, p. 337–351, 2021. DOI: https://doi.org/10.1007/s00359-021-01464-8.

TOSUN, O.; YAMAN, M. The effects of temperature and humidity around the beehives on the distribution of Nosema ceranae, and also geographical and seasonal activity of the infection in the Eastern Black Sea region of Turkey. Journal of Environmental Science and Engineering B, New York, v. 5, n. 11, p. 673–678, 2016. DOI: https://doi.org/10.17265/2162-5263/2016.11.001.

TRAYNOR, K. S.; MONDET, F.; DE MIRANDA, J. R.; TECHER, M.; KOWALLIK, V.; ODDIE, M. B. A. Y.; CHANTAWANNAKUL, P.; MCAFEE, A. Varroa destructor: a complex parasite, crippling honey bees worldwide. Trends in Parasitology, London, v. 36, n. 7, p. 592–606, 2020. DOI: https://doi.org/10.1016/j.pt.2020.04.004.

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  • Resiliência das colmeias
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